
Poznanie przez słuchaczy podstawowych działów sztucznej inteligencji z uwzględnieniem ich zastosowań w automatyce i rozwiązanie wybranych zagadnień w czasie zajęć laboratoryjnych
- Nauczyciel: Tomasz Białaszewski
- Nauczyciel: KAJETAN Kruczkowski

Poznanie przez słuchaczy podstawowych działów sztucznej inteligencji z uwzględnieniem ich zastosowań w automatyce i rozwiązanie wybranych zagadnień w czasie zajęć laboratoryjnych

ŚRODKI TRANSPORTU - cz, morska
Wykład i Ćwiczenia - 5 tygodni
prowadzący: Daniel PIĄTEK, WIMiO, IO


CourseTeam research project implemented in the first and second semesters of second-cycle studies at the Faculty of Architecture in the field of study: Spatial Development.

The main aim of the course is to familiarize students with the basic problems in team strategies, such as: the use of the particle swarm optimization algorithms, the ant colony optimization, stochastic distributed searches, algorithms for team strategy, multi-agent systems, modeling intelligent cooperation, simulations of social behavior. The form of passing the course is passing the exam and completing a project task

Technika laserowa: 1 st. 6 sem. EiT, strumień Elektronika
Wykład dla sem. I - studia mgr WETI, kier. EiT, specj. Inżynieria dźwięku i obrazu.
Celem przedmiotu jest zapoznanie studentów z zagadnieniami akustyki wnętrz i techniki nagłaśniania, przekazanie wiedzy z zakresu proj. systemów nagłośnieniowych w CADAach akustycznych.
Kurs dotyczący części laboratoryjnej przedmiotu Technika obliczeniowa i symulacyjna , studia I stopnia na WETI PG, sem. 2, kierunek EiT
Prowadzący:
Zajęcia przeznaczone są dla studentów 1. semestru studiów II stopnia. Celem przedmiotu jest zapoznanie z teorią i praktycznymi zagadnieniami z odbioru radiowego ze szczególnym uwzględnieniem systemów cyfrowych.
The class is intended for students of the 1st semester of the second degree program. The purpose of the course is to introduce the theory and practical issues of radio reception with particular emphasis on digital systems.
Kurs jest przeznaczony dla studentów 6 sem. studiów pierwszego stopnia dla kierunku Informatyka.

Technika światłowodowa i fotonika: 2 st. 2 sem., kierunek elektronika i telekomunikacja

Specjalność: Biotechnologia molekularna (WCh), II stopnia, stacjonarne
Prowadzący wykład: dr hab. Beata Krawczyk, prof. uczelni - forma stacjonarna
Prowadzący laboratoria: dr hab. Beata Krawczyk, prof. uczelni- zajęcia stacjonarne na PG, sala 304 WCH B (bud.7); III piętro.
Kontakt: (58) 347-23-83
Beata Krawczyk (wykłady): e-mail: beata.krawczyk@pg.edu.pl; WCH B; p.217;tel. (58) 347-23-83
Bartosz Ostrowski, WCH B, p.218 tel. (58) 347-13-83
Konsultacje: stacjonarnie we wtorek 1300 po uprzednium umówieniu się drogą e-mailową. Konsultacje z laboratoriów do uzgodnienia z prowadzącym.
Opis kursu
Kurs dotyczy technik amplifikacji kwasów nukleinowych, zarówno tych związanych z amplifikacją matrycy, jak i tych stosowanych w amplifikacji sygnału czy sondy. Poza metodyką związaną z praktycznym stosowaniem różnych metod, omówione zostaną przykłady zastosowań różnych technik.
Laboratoria według planu zajęć
Zasady zaliczenia przedmiotu:
WYKŁAD
LABORATORIA
Szczegółowy program
Wykłady: Dodatnie strony testów opartych o kwasy nukleinowe (NAT). Metody amplifikacji targetu. Organizacja laboratorium amplifikacji kwasów nukleinowych Historia techniki PCR. Zasada działania (pracy) PCR, kinetyka reakcji, pierwsze kroki w nastawianiu PCR, analiza produktów amplifikacji. Podstawy PCR – reagenty i urządzenia do PCR (termocyklery): matryce do PCR (kwasy nukleinowe), odczynniki (dNTP, Mg2+), bufory do PCR –skład, startery oligonukleotydowe, polimerazy do PCR (właściwości). Przygotowanie matrycy do PCR i inhibitory. Optymalizacja PCR. Rozwiązywanie problemów, substancje wpływające na efektywność PCR: inhibicja i wzmacnianie. HOT-start PCR. Touchdown PCR. Strony dodatnie stosowania PCR i ograniczenia (problemy z kontaminacją, zwalczanie i zapobieganie, kontrole w reakcji PCR). Poprawa specyficzności reakcji PCR. Wewnętrzny (zagnieżdżony) PCR (nested PCR) podnosi czułość reakcji. Złożony PCR (multiplex PCR). Asymetryczny PCR w przygotowywaniu ssDNA do sekwencjonowania. Analiza ekspresji genów w wykorzystaniem RT-PCR, semi-ilościowy i ilościowy PCR. Kompetytywny PCR. Allelo-specyficzna amplifikacja (ASA). Szybka amplifikacja końców cDNA (RACE). Metoda T-RFLP do badania mikroorganizmów środowiskowych. Podstawy Real-time PCR. Genotypowanie z zastosowaniem RAPD (przypadkowe amplifikowanie polimorficznego DNA). Metody oparte o ligację adaptorów oligonukleotydowych i PCR (LM PCR). Technika LAMP. Zastosowanie PCR w diagnostyce molekularnej. Alternatywne techniki amplifikacji kwasów nukleinowych (NASBA, TMA, SDA, MDA, OLA). Zastosowanie polimerazy Phi29. Metody amplifikacji sygnału (bDNA, hybryd capture assay) i metody amplifikacji sondy.
Laboratoria: Strategia optymalizacji reakcji PCR: optymalizacja temperatury przyłączania starterów, stężenia DNA - badanie czułości reakcji, optymalizacja dNTP i Mg2+, składu buforu do PCR. Badanie substancji wpływających na PCR: inhibitory i wzmacniacze. Inhibicja pochodząca od odczynników podczas izolacji DNA (proteinaza, fenol, SDS, EDTA, materiał biologiczny-krew). Efekt inhibicji określonego stężenia SDS na aktywność polimerazy i znoszenie działania hamującego SDS przez Tween20. Ocena efektywności działania wzmacniaczy (podnoszenie wydajności PCR z użyciem odpowiedniego panelu wzmacniaczy) Multiplex PCR - wykrywanie dwóch różnych regionów genomu w jednej probówce - optymalizacja. Amplifikacja totalnego DNA z zastosowaniem polimerazy Phi29.

Specjalność: Biotechnologia molekularna (WCh), II stopnia, stacjonarne
Prowadzący wykład: dr hab. Beata Krawczyk, prof. uczelni - stacjonarnie na uczelni
Prowadzący laboratoria: dr hab. Beata Krawczyk, prof. uczelni - zajęcia stacjonarne na PG, sala 304 WCH B.
Kontakt: (58) 347-23-83
Beata Krawczyk (wykłady): e-mail: beata.krawczyk@pg.edu.pl; WCH B; p.217;
Konsultacje: stacjonarnie we wtorki o godzinie 13.
Opis kursu
Kurs dotyczy technik amplifikacji kwasów nukleinowych, zarówno tych związanych z amplifikacją matrycy, jak i tych stosowanych w amplifikacji sygnału czy sondy. Poza metodyką związaną z praktycznym stosowaniem różnych metod, omówione zostaną przykłady zastosowań różnych technik.
Zasady zaliczenia przedmiotu:
WYKŁAD
LABORATORIA
Szczegółowy program
Wykłady: Dodatnie strony testów opartych o kwasy nukleinowe (NAT). Metody amplifikacji targetu. Organizacja laboratorium amplifikacji kwasów nukleinowych Historia techniki PCR. Zasada działania (pracy) PCR, kinetyka reakcji, pierwsze kroki w nastawianiu PCR, analiza produktów amplifikacji. Podstawy PCR – reagenty i urządzenia do PCR (termocyklery): matryce do PCR (kwasy nukleinowe), odczynniki (dNTP, Mg2+), bufory do PCR –skład, startery oligonukleotydowe, polimerazy do PCR (właściwości). Przygotowanie matrycy do PCR i inhibitory. Optymalizacja PCR. Rozwiązywanie problemów, substancje wpływające na efektywność PCR: inhibicja i wzmacnianie. HOT-start PCR. Touchdown PCR. Strony dodatnie stosowania PCR i ograniczenia (problemy z kontaminacją, zwalczanie i zapobieganie, kontrole w reakcji PCR). Poprawa specyficzności reakcji PCR. Wewnętrzny (zagnieżdżony) PCR (nested PCR) podnosi czułość reakcji. Złożony PCR (multiplex PCR). Asymetryczny PCR w przygotowywaniu ssDNA do sekwencjonowania. Analiza ekspresji genów w wykorzystaniem RT-PCR, semi-ilościowy i ilościowy PCR. Kompetytywny PCR. Allelo-specyficzna amplifikacja (ASA). Szybka amplifikacja końców cDNA (RACE). Metoda T-RFLP do badania mikroorganizmów środowiskowych. Podstawy Real-time PCR. Genotypowanie z zastosowaniem RAPD (przypadkowe amplifikowanie polimorficznego DNA). Metody oparte o ligację adaptorów oligonukleotydowych i PCR (LM PCR). Technika LAMP. Zróżnicowana liczba tandemowych powtórzeń w badaniach tożsamości. Zastosowanie PCR w diagnostyce molekularnej Alternatywne techniki amplifikacji kwasów nukleinowych (NASBA, TMA, SDA, MDA, OLA). Zastosowanie polimerazy Phi29. Metody amplifikacji sygnału (bDNA, hybryd capture assay) i metody amplifikacji sondy.
Laboratoria: Strategia optymalizacji reakcji PCR: optymalizacja temperatury przyłączania starterów, stężenia DNA - badanie czułości reakcji, optymalizacja dNTP i Mg2+, składu buforu do PCR. Badanie substancji wpływających na PCR: inhibitory i wzmacniacze. Inhibicja pochodząca od odczynników podczas izolacji DNA (proteinaza, fenol, SDS, EDTA, materiał biologiczny-krew). Efekt inhibicji określonego stężenia SDS na aktywność polimerazy i znoszenie działania hamującego SDS przez Tween20. Ocena efektywności działania wzmacniaczy (podnoszenie wydajności PCR z użyciem odpowiedniego panelu wzmacniaczy) Multiplex PCR - wykrywanie dwóch różnych regionów genomu w jednej probówce - optymalizacja.

Wydział Architektury, Politechnika Gdańska
Kierunek: Gospodarka Przestrzenna, studia stacjonarne I stopnia, I rok, 2 semestr, rok akad. 2023/2024
Przedmiot: Techniki Informacyjne
Opis: wykorzystanie oprogramowania CAD w sporządzaniu dokumentacji planistycznej oraz w projektowaniu urbanistycznym.

Wydział Architektury, Politechnika Gdańska
Kierunek: Gospodarka Przestrzenna, studia stacjonarne I stopnia, I rok, 2 semestr, rok akad. 2023/2024
Przedmiot: Techniki Informacyjne
Opis: wykorzystanie oprogramowania CAD w sporządzaniu dokumentacji planistycznej oraz w projektowaniu urbanistycznym.

Kurs przeznaczony jest dla studentów:
kierunek Biotechnologia,
specjalność: Technologia, biotechnologia i analiza żywności (WCh)
realizujących zajęcia w 6 semestrze, studiów I stopnia.
Kurs obejmuje wykłady oraz zajęcia laboratoryjne
Za kurs odpowiada dr inż. hab. Dorota Martysiak-Żurowska, prof. PG.

Kurs e-learningowy stanowi uzupełnienie zajęć stacjonarnych z Technik Komputerowych dla studentów II stopnia (2 semestr)
Celem zajęć jest nauka elementów systemu informacji geograficznej (GIS), technik modelowania oraz narzędzi do analiz środowiskowych.

Kurs e-learningowy stanowi uzupełnienie zajęć stacjonarnych z Technik Komputerowych dla studentów II stopnia (2 semestr)
Celem zajęć jest nauka elementów systemu informacji geograficznej (GIS), technik modelowania oraz narzędzi do analiz środowiskowych.